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    本生快訊——ELISA實驗操作注意事項及常見問題解答

    更新時間:2023-05-31    點擊次數(shù):3195

      本生快訊——ELISA實驗操作注意事項及常見問題解答


      一、ELISA操作前準(zhǔn)備工作

      試劑盒的選擇

      ELISA操作前,應(yīng)做好實驗的設(shè)計、選擇適合自己檢測范圍和靈敏度的試劑盒、提前訂購和準(zhǔn)備試劑及耗材、處理樣本等準(zhǔn)備工作。

      樣本處理

      在收集標(biāo)本前需有一個完整的計劃,需要清楚要檢測的成份是否足夠穩(wěn)定。ELISA檢測提倡新鮮標(biāo)本盡早檢測,對收集后當(dāng)天就進(jìn)行檢測的標(biāo)本,及時儲存在4℃?zhèn)溆茫缬刑厥庠蛐枰芷谑占瘶?biāo)本,請取材后,將標(biāo)本及時分裝后放在-20℃或-70℃條件下保存。因冰室與室溫存在一定溫差,蛋白極易降解,直接影響實驗質(zhì)量,所以避免反復(fù)凍融。

      二、ELISA標(biāo)準(zhǔn)品溶解

      標(biāo)準(zhǔn)品是試劑盒的檢測抗原的一個度量標(biāo)尺,因此標(biāo)準(zhǔn)品的溶解、倍比稀釋和保存要特別注意以下細(xì)節(jié):凍干標(biāo)準(zhǔn)品溶解按照說明書的要求,準(zhǔn)確復(fù)溶。在冰上操作標(biāo)準(zhǔn)品為佳,靜止5-10分鐘,輕輕搖勻后按照一次量分裝,在-20度或-70度保存。標(biāo)準(zhǔn)品嚴(yán)禁反復(fù)凍融。標(biāo)準(zhǔn)品的倍比稀釋應(yīng)事先做好準(zhǔn)備,如離心管的準(zhǔn)備和編號以及稀釋液的準(zhǔn)備;稀釋時,應(yīng)充分混勻;采用進(jìn)口或者硅化的EP管,減少蛋白吸附。在實驗孔內(nèi)進(jìn)行倍比稀釋時,注意操作規(guī)范,槍頭勿刮劃預(yù)包被的孔底。


    試劑盒1.jpg

      三、ELISA操作中的洗滌

      洗滌是ELISA實驗中是最多次數(shù)的操作,也是非常重要的步驟。不嚴(yán)格的洗滌容易出現(xiàn)洗不干凈或交叉污染現(xiàn)象,實驗重復(fù)效果差的現(xiàn)象。不管用多道加樣器、洗瓶、吸管,還是洗板機(jī),嚴(yán)格按照說明書操作不要減少步驟洗滌的洗滌體積、洗滌時間和洗滌次數(shù)。注意標(biāo)準(zhǔn)化操作將減少實驗誤差和不同實驗之間的誤差。操作者常出現(xiàn)洗板不干凈現(xiàn)象,請比照“手工洗板小貼士"操作:

      a)洗液不要溢出孔外,以免污染相鄰的孔,特別是每次洗板的前兩遍,若高濃度的孔污染了低濃度的孔或空白孔,其造成的交叉污染的孔是洗不掉的,背景肯定會增高。

      b)特別注意:設(shè)計實驗的時候要考慮實驗孔的位置,保證甩掉洗液時,空白孔、低濃度孔或陰性對照組在上面或一側(cè)或分開最好。同時注意甩掉洗液的動作翻轉(zhuǎn)(從正上方旋轉(zhuǎn)120-150度)要迅速、干脆。甩板不要手腕左右搖擺、旋轉(zhuǎn)來甩液體!甩出后以直線方式補2-3次甩出液體。

      c)用干凈的濾紙,不要用衛(wèi)生紙,因為細(xì)小粉塵或者碎屑容易吸附到孔底,導(dǎo)致洗板不干凈,結(jié)果偏高或偏低,重復(fù)孔的數(shù)值也會相差很大。

      d)每次拍板不要重復(fù)在一個地方拍,特別是洗去酶的步驟;拍板不宜過輕,否則拍不干凈,拍板很用力不會對蛋白有什么影響。但注意不要太重,以至把板條給拍斷。每次洗板后輕叩幾下,最后一次一定要扣干凈。

      e)不能減少洗液體積、洗板時間和次數(shù)。洗板時間太短,洗板效果不佳。延長洗板時間和增加洗板次數(shù)可以使背景更干凈。

      四、ELISA的標(biāo)準(zhǔn)曲線如何擬合?

      一般情況按照說明書推薦方法擬合標(biāo)準(zhǔn)曲線。標(biāo)準(zhǔn)曲線可以由酶標(biāo)儀附帶軟件自動生成,也可手動制作。標(biāo)準(zhǔn)曲線呈“S"形曲線,兩端趨于水平,中間趨于線性,中間部分為較佳的檢測范圍。當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)品的量超過與包被抗體結(jié)合的量,此時標(biāo)準(zhǔn)品已飽和,再增加標(biāo)準(zhǔn)品的量,其OD值不再變化,故當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)品達(dá)到一定濃度后,曲線就趨于水平。一般廠商給出的濃度范圍落在中間線性范圍,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線,可以測出樣本的濃度。按照科學(xué)分析方法,如果存在“奇異點"或者“污點",直接采用線性分析不是很好,要對擬合標(biāo)準(zhǔn)曲線的幾個點進(jìn)行取舍,同時也可改用雙對數(shù)直線擬合或者四因素曲線擬合。

      五、常見問題

      1、ELISA試驗出現(xiàn)非常弱的結(jié)果,常見有7種原因,其解決方法如下:

      1)可能原因:溫育的時間或者溫度不夠;

      解決方法:校正溫育箱溫度。

      2)可能原因:顯色反應(yīng)時間太短;

      解決方法:校正定時鐘準(zhǔn)確定時。

      3)可能原因:所用配制緩沖液的蒸餾水有問題;

      解決方法:使用新鮮合格的蒸餾水。

      4)可能原因:加入抗體/酶的稀釋液濃度太低;

      解決方法:按照說明書保存試劑盒和準(zhǔn)確配制工作液。校正移液器,吸嘴要配套,裝吸嘴時要緊密。

      5)可能原因:酶標(biāo)儀濾光片不正確;

      解決方法:檢查酶標(biāo)儀使用的濾光片。

      6)可能原因:試劑盒沒有充分平衡;

      解決方法:試劑室溫平衡至少20分鐘,確保所有試劑已平衡至室溫。

      7)可能原因:不正確的試劑儲存方式;

      解決方法:按照說明書要求保存試劑盒。

      2、試驗的標(biāo)準(zhǔn)曲線和測定的重復(fù)性差,這是什么原因造成的?

      答:試驗的標(biāo)準(zhǔn)曲線和測定的重復(fù)性差,這是典型的由測定操作引起的問題,常見原因如下:

      a)可能原因:加樣本及試劑量不準(zhǔn);孔間不一致;

      解決方法:校正移液器,吸嘴要配套,裝吸嘴時要緊密。

      重復(fù)某一樣品時,加樣時間盡可能與第一次接近;

      重復(fù)測定標(biāo)本,操作條件、人員等應(yīng)盡可能與上次保持一致,以排除這些因素造成的不一致的可能性;

      樣品稀釋前應(yīng)充分混勻。

      b)可能原因:加樣過快,孔間發(fā)生污染;

      解決方法:重復(fù)測定標(biāo)本,操作條件、人員等應(yīng)盡可能與上次保持一致,以排除這些因素造成的不一致的可能性;加樣不要過快。

      c)可能原因:加錯樣本;

      解決方法:檢查記錄和試劑,是否加錯樣本。

      d)可能原因:加樣本及試劑時,加在孔壁上部非包被區(qū);

      解決方法:加樣槍頭不要貼壁。

      e)可能原因:不同批號試劑盒中組分混用;

      解決方法:不同批號試劑盒中組分不可混用。

      f)可能原因:溫育時間、洗板、顯色時間不一致;

      解決方法:檢查時間是否一致。

      g)可能原因:孔內(nèi)污染雜物;

      解決方法:離心樣品,排除雜物。

      h)可能原因:試劑/樣品沒有混勻;

      解決方法:充分混勻樣品和試劑。

      i)可能原因:血清標(biāo)本未*凝固即加入,反應(yīng)孔內(nèi)出現(xiàn)纖維蛋白凝固或殘留血

      細(xì)胞,易出現(xiàn)假陽性反應(yīng)等。

      解決方法:待血清標(biāo)本*凝固后做試驗。

      3、 試驗結(jié)果白板,而且陽性對照不顯色,應(yīng)如何分析和查找原因?

      答:試驗結(jié)果白板,而且陽性對照不顯色,常見原因如下:

      a)可能原因:漏加或者誤加試劑;

      解決方法:檢查試驗記錄和剩余試劑。每次加液前均應(yīng)核對標(biāo)簽。

      b)可能原因:試劑過期;

      解決方法:使用有效期內(nèi)的產(chǎn)品。

      c)可能原因:洗板液配制中出現(xiàn)問題,如量筒不干凈含HRP酶抑制物(疊氮鈉

      等);

      解決方法:使用干凈的器皿,正確配制試劑。

      d)可能原因:溫育的時間或溫度不夠;

      解決方法:校正溫育箱溫度。

      e)可能原因:標(biāo)準(zhǔn)品失活或者丟失;

      解決方法:標(biāo)準(zhǔn)品正確保存、溶解和混勻。

      f)可能原因:抗體失活或者丟失;

      解決方法:更換抗體或者提高抗體濃度

      g)可能原因:酶失活或者丟失

      檢查方法:把工作濃度的酶再稀釋20-100倍,取5uL加入50ul的顯色底物,終止后顯色是否能達(dá)到1.0左右,此為酶的粗略估計。

      解決方法:更換酶或者提高酶的濃度。

      h)可能原因:顯色底物失活

      檢查方法:加少量的工作濃度的酶,TMB是否很快顯色。

      解決辦法:更換顯色底物.

      4. 試驗結(jié)果空白背景高,這是什么原因造成的?

      答:試驗結(jié)果空白背景高,常見原因如下:

      a)可能原因:洗板不干凈;

      解決方法:充分洗滌,*拍干;洗板要防止交叉污染;濃縮洗液準(zhǔn)確配制;吸嘴盡可能一次性使用;加樣或加酶拍板的濾紙應(yīng)棄去不用,不要反復(fù)使用,否則易造成污染。

      b)可能原因:顯色液變質(zhì)或者試劑過期;

      解決方法:檢查試劑盒有效期。

      c)可能原因:試劑稀釋有誤,如加酶的濃度過高;

      解決方法:請按說明書所示稀釋倍數(shù)配制;

      d)可能原因:蒸餾水受酶等污染;

      解決方法:使用新鮮蒸餾水;

      e)可能原因:試劑混用;

      解決方法:不同批號試劑勿混用。

      f)可能原因:培養(yǎng)箱溫度超過37℃或反應(yīng)時間過長。

      解決方法:顯色反應(yīng)時間適當(dāng)縮短。

      ELISA實驗 本生一直視質(zhì)量控制為企業(yè)的生命,追求企業(yè)競爭力的不斷提升。公司在經(jīng)營中始終秉承:遵紀(jì)守法,嚴(yán)于律己,寬仁以待,敢于承擔(dān)的企業(yè)精神作為標(biāo)準(zhǔn),以過硬的質(zhì)量和優(yōu)良的服務(wù)來維護(hù)和拓展市場,較大限度的滿足客戶的需求。與客戶的共贏,是我們的發(fā)展目標(biāo)。本生!您信任的合作伙伴。我們愿與您真誠合作,共創(chuàng)美好的未來。


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